オプション
～
検索条件をクリア

書籍詳細

未契約
書籍名 別冊・医学のあゆみ 再生医療はどこまで進んだか
出版社 医歯薬出版
発行日 2021-05-25
著者
  • 長船健二(編)
ISBN
ページ数 143
版刷巻号 第1版第1刷
分野
シリーズ 別冊「医学のあゆみ」
閲覧制限 未契約

再生医療の現在地と未来がここに!がんや糖尿病など、各分野における再生医療と創薬の動向を解説!オルガノイドをはじめ、今後臨床応用が期待される技術も紹介。現時点での再生医学・医療のスタンダードとして、また後世の知見との比較対象としても役立つ内容。

目次

  • 表紙
  • CONTENTS
  • はじめに
    P.1
  • 体性幹細胞・体細胞を用いた細胞療法開発と臨床試験
    P.3
    • 1. 再生医療が切り開く炎症性腸疾患治療の新時代 - 炎症性腸疾患に対する腸幹細胞移植の開発と展望
    • 2. 水疱性角膜症に対する培養ヒト角膜内皮細胞注入療法
      • サイドメモ 角膜内皮細胞の評価法
      • サイドメモ LogMAR視力
    • 3. 間葉系幹細胞投与による肝線維化改善, 再生誘導効果 - 基礎研究成果の臨床応用
  • iPS / ES細胞を用いた細胞療法開発と臨床試験
    P.21
    • 4. iPS細胞を用いた網膜疾患に対する再生医療
    • 5. iPS細胞を用いたパーキンソン病に対する再生医療
      • サイドメモ PDに対する胎児中脳由来細胞移植
    • 6. iPS細胞を用いた脊髄損傷に対する再生医療
    • 7. iPS細胞技術を用いた輸血治療の展望
    • 8. 同種iPS細胞由来軟骨を用いた関節軟骨損傷に対する再生医療
    • 9. iPS細胞を用いた心疾患に対する再生医療
    • 10. iPS細胞を用いた角膜疾患に対する再生医療
    • 11. iPS細胞を用いたがんに対する免疫療法
    • 12. ES細胞を用いた先天性代謝異常症に対する再生医療
      • サイドメモ ヒトES細胞
    • 13. iPS細胞を用いた腎疾患と糖尿病に対する再生医療の開発
  • 疾患特異的iPS細胞を用いた創薬と臨床試験
    P.81
    • 14. 疾患特異的iPS細胞を用いた骨格系統疾患の病態解明から創薬へ
    • 15. 内耳性難聴に対するiPS細胞創薬
    • 16. 神経変性疾患に対するiPS創薬と臨床試験
  • 今後の応用が期待される技術開発
    P.107
    • 17. iPS細胞臨床応用をめざしたゲノム編集による低抗原性iPS細胞の作製
      • サイドメモ マイナー抗原
      • サイドメモ NK細胞の免疫応答
      • サイドメモ さまざまな免疫抑制機構と抑制遺伝子
    • 18. 臨床応用をめざすヒューマンオルガノイド研究
    • 19. マイクロ生体機能模倣システム ( MPS ) を用いた創薬研究の現状と展望
      • サイドメモ Organ - on - a - ChipとMPS
      • サイドメモ 3Rの原則
    • 20. 異種動物を用いた三次元臓器の作出
  • 奥付

参考文献

体性幹細胞・体細胞を用いた細胞療法開発と臨床試験

P.9 掲載の参考文献

  • 6) Aoki R et al. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 2016 ; 2 : 175-88.
    pubmed
  • 7) Sato T et al. Nature 2009 ; 459 : 262-5.
  • 11) Dekkers JF et al. Nat Med 2013 ; 19 : 939-45.
  • 12) Spence JR et al. Nature 2011 ; 470 : 105-9.
    pubmed
  • 13) Munera JO et al. Cell Stem Cell 2017 ; 21 : 51-64 e56.
  • 14) Watson CL et al. Nat Med 2014 ; 20 : 1310-4.
    pubmed
  • 15) Michael JW et al. Nat Med 2017 ; 23 : 49-59.
  • 16) Emily MH et al. Dev Cell 2020 ; 54 : 516-28.
  • 17) Fordham RP et al. Cell Stem Cell 2013 ; 13 : 734-44.
    pubmed
  • 18) Fukuda M et al. Genes Dev 2014 ; 28 : 1752-7.
    pubmed
  • 19) Yui S et al. Cell Stem Cell 2018 ; 22 : 35-49 e7.

P.15 掲載の参考文献

  • 1) 木下茂・他. 角膜内皮障害の重症度分類. 日本眼科学会雑誌 2014 ; 118 : 81-3.
  • 2) 小泉範子・他. 日本における角膜再生医療の現状. 日本眼科学会雑誌 2007 ; 111 : 493-503.
    Medical*Online
  • 3) 木下茂・他. 角膜疾患の未来医療. 日本眼科学会雑誌 2010 ; 114 : 161-201.
    Medical*Online
  • 4) Watanabe K et al. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nat Biotechnol 2007 ; 25 : 681-6.
  • 5) Okumura N et al. Enhancement on primate corneal endothelial cell survival in vitro by a ROCK inhibitor. Invest Ophthalmol Vis Sci 2009 ; 50 : 3680-7.
    pubmed
  • 6) Okumura N et al. ROCK inhibitor converts corneal endothelial cells into a phenotype capable of regenerating in vivo endothelial tissue. Am J Pathol 2012 ; 181 : 268-77.
    pubmed
  • 7) Okumura N et al. Rho kinase inhibitor enables cell-based therapy for corneal endothelial dysfunction. Sci Rep 2016 ; 6 : 26113.
    pubmed
  • 8) Hamuro J et al. Cultured human corneal endothelial cell aneuploidy dependence on the presence of heterogeneous subpopulations with distinct differentiation phenotypes. Invest Ophthalmol Vis Sci 2016 ; 57 : 4385-92.
    pubmed
  • 9) Hamuro J et al. Cell homogeneity indispensable for regenerative medicine by cultured human corneal endothelial cells. Invest Ophthalmol Vis Sci 2016 ; 57 : 4749-61.
    pubmed
  • 10) Ueno M et al. MicroRNA profiles qualify phenotypic features of cultured human corneal endothelial cells. Invest Ophthalmol Vis Sci 2016 ; 57 : 5509-17.
    pubmed
  • 11) Ueno M et al. Gene signature-based development of ELISA assays for reproducible qualification of cultured human corneal endothelial cells. Invest Ophthalmol Vis Sci 2016 ; 57 : 4295-305.
    pubmed
  • 12) Hamuro J et al. Metabolic plasticity in cell state homeostasis and differentiation of cultured human corneal endothelial cells. Invest Ophthalmol Vis Sci 2016 ; 57 : 4452-63.
    pubmed

P.19 掲載の参考文献

  • 15) Mizunaga Y et al. Granulocyte colony-stimulating factor and interleukin-1β are important cytokines in repair of the cirrhotic liver after bone marrow cell infusion : comparison of humans and model mice. Cell Transplant 2012 ; 21 (11) : 2363-75.

iPS / ES細胞を用いた細胞療法開発と臨床試験

P.28 掲載の参考文献

  • 14) 京都大学iPS細胞研究所 (CiRA). 「滲出型加齢黄斑変性に対する他家iPS細胞由来網膜色素上皮細胞懸濁液移植に関する臨床研究」の報告について. 2018. (https://www.cira.kyoto-u.ac.jp/j/pressrelease/news/180116-173000.html)

P.34 掲載の参考文献

P.40 掲載の参考文献

  • 14) Tanimoto Y et al. In vivo monitoring of remnant undifferentiated neural cells following human iPS cell-derived neural stem/progenitor cells transplantation. Stem Cells Transl Med 2020. doi : 10.1002/sctm.19-0150. [Epub ahead of print]

P.47 掲載の参考文献

  • 1) Hagisawa K et al. Combination therapy using fibrinogen γ-chain peptide-coated, ADP-encapsulated liposomes and hemoglobin vesicles for trauma-induced massive hemorrhage in thrombocytopenic rabbits. Transfusion 2019 ; 59 (10) : 3186-96.
  • 2) Nishimura S et al. IL-1α induces thrombopoiesis through megakaryocyte rupture in response to acute platelet needs. J Cell Biol 2015 ; 209 : 453-66.
  • 14) 半田誠. より安全かつ適正な輸血医療を目指して. 臨床血液 2015 ; 56 : 2170-9.
  • 16) Suzuki D et al. iPSC-derived platelets depleted of HLA class-I are inert to anti-HLA class-I and NK cell immunity. Stem Cell Reports 2019 Dec 13 [Epub ahead of print]
  • 21) Vanuytsel K et al. Induced pluripotent stem cell-based mapping of β-globin expression throughout human erythropoietic development. Blood Adv 2018 ; 2 (15) : 1998-2011.

P.52 掲載の参考文献

  • 6) Takahashi K et al. Cell 2007 ; 131 : 861-72.
    pubmed

P.56 掲載の参考文献

P.61 掲載の参考文献

P.65 掲載の参考文献

  • 3) Liu E et al. N Engl J Med 2020 ; 382 (6) : 545-53.

P.72 掲載の参考文献

  • 3) 早川堯夫・他. ヒト幹細胞を用いた細胞・組織加工医薬品等の品質及び安全性確保に関する研究 (その5) ヒトES細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針案 (中間報告). 再生医療 2010 ; 9 (1) : 166-80.
    Medical*Online
  • 4) 独立行政法人医薬品医療機器総合機構. 科学委員会報告書. 『iPS細胞等をもとに製造される細胞組織加工製品の造腫瘍性に関する議論のまとめ』2013. (https://www.pmda.go.jp/files/000155505.pdf)
  • 5) 厚生労働省. 特定認定再生医療等委員会におけるヒト多能性幹細胞を用いる再生医療等提供計画の造腫瘍性評価の審査のポイント (平成28年6月13日 医政研発0613 第3号別添), 2016. (http://www.nihs.go.jp/cbtp/sispsc/pdf/Annex_0613-3_2016.pdf)
  • 7) 独立行政法人医薬品医療機器総合機構. 新医薬品承認審査実務に関わる審査員のための留意事項. 平成20年4月17日, 2008. (https://www.pmda.go.jp/files/000157674.pdf)
  • 8) 独立行政法人医薬品医療機器総合機構. ICH E8 ガイドライン. 臨床試験の一般指針, 1998.
  • 9) 独立行政法人医薬品医療機器総合機構. ICH E9 ガイドライン. 臨床試験のための統計的原則, 1998.

P.79 掲載の参考文献

  • 1) 長船健二. iPS細胞を用いた腎疾患と糖尿病に対する再生医療の開発に向けて. Organ Biol 2019 ; 26 : 11-21.
    Medical*Online
  • 13) Pagliuca FW et al. Generation of functional human pancreatic β cells in vitro. Cell 2014 ; 159 : 428-39.
  • 16) Nair GG et al. Emerging routes to the generation of functional β-cells for diabetes mellitus cell therapy. Nat Rev Endocrinol 2020 ; 16 : 506-18.
  • 18) Kimura A et al. Combined omics approaches reveal the roles of non-canonical WNT7B signaling and YY1 in the proliferation of human pancreatic progenitor cells. Cell Chemical Biology In press.

疾患特異的iPS細胞を用いた創薬と臨床試験

P.87 掲載の参考文献

  • 6) Matsuda M et al. Recapitulating the human segmentation clock with pluripotent stem cells. Nature in press.

P.97 掲載の参考文献

  • 1) 厚生労働省. 平成23年生活のしづらさなどに関する調査 (全国在宅障害児・者等実態調査) 2011.
  • 2) WHO. WHO global estimates on prevalence of hearing loss. 2012.
  • 4) 厚生労働省. 認知症施策推進総合戦略 (新オレンジプラン). 2018.
  • 5) Hain TC. Meniere's Disease. dizziness-and-balance.com.2020. (https://www.dizziness-and-balance.com/disorders/menieres/menieres.html)
  • 6) 本間研一 監, 大森治紀・他編. 標準生理学 第9版. 医学書院 ; 2019.
  • 8) Pendred V. Deaf-mutism and goitre. Lancet 1896 ; ii : 5332.
  • 16) 藤岡正人. NPC-12T 治験薬概要書. 2017.

P.106 掲載の参考文献

  • 6) Kondo T et al. Cell Stem Cell 2013 ; 12 (4) : 487-96.
    pubmed
  • 9) Imamura K et al. Sci Transl Med 2017 ; 9 (391) : eaaf3962.
    pubmed
  • 10) Imamura K et al. BMJ Open 2019 ; 9 (12) : e033131.
    pubmed
  • 12) Fujimori K et al. Nat Med 2018 ; 24 (10) : 1579-89.
    pubmed
  • 13) Morimoto S et al. Regen Ther 2019 ; 11 : 143-66.
    pubmed
  • 14) Burkhardt MF et al. Mol Cell Neurosci 2013 ; 56 : 355-64.
    pubmed
  • 15) Shi Y et al. Nat Med 2018 ; 24 (3) : 313-25.
    pubmed
  • 16) Yamaguchi A et al. Stem Cell Reports 2020 ; 14 (6) : 1060-75.
    pubmed
  • 17) Mertens J et al. Stem Cell Reports 2013 ; 1 (6) : 491-8.
    pubmed
  • 18) Liu Q et al. JAMA Neurol 2014 ; 71 (12) : 1481-9.
    pubmed
  • 19) Wainger BJ et al. Cell Rep 2014 ; 7 (1) : 1-11.
    pubmed
  • 20) Cooper O et al. Sci Transl Med 2012 ; 4 (141) : 141ra90.
    pubmed
  • 21) Reinhardt P et al. Cell Stem Cell 2013 ; 12 (3) : 354-67.
    pubmed
  • 22) Kouroupi G et al. Proc Natl Acad Sci 2017 ; 114 (18) : 3679-88.
  • 23) Imamura K et al. Sci Rep 2016 ; 6 (1) : 34904.
  • 24) Donnelly CJ et al. Neuron 2013 ; 80 (2) : 415-28.
    pubmed
  • 25) Sareen D et al. Sci Transl Med 2013 ; 5 (208) : 208ra149.
    pubmed
  • 26) Ishida Y et al. Cell Rep 2016 ; 17 (6) : 1482-90.
    pubmed
  • 27) Choi SH et al. Nature 2014 ; 515 (7526) : 274-8.
    pubmed
  • 28) Raja WK et al. PLoS One 2016 ; 11 (9) : e0161969.
    pubmed
  • 29) Lee HK et al. PLoS One 2016 ; 11 (9) : e0163072.
    pubmed
  • 30) Israel MA et al. Nature 2012 ; 482 (7384) : 216-20.
    pubmed
  • 31) Duan L et al. Mol Neurodegener 2014 ; 9 (1) : 3.
  • 32) Muratore CR et al. Hum Mol Genet 2014 ; 23 (13) : 3523-36.
    pubmed
  • 33) Moore S et al. Cell Rep 2015 ; 11 (5) : 689-96.
    pubmed
  • 34) Bright J et al. Neurobiol Aging 2015 ; 36 (2) : 693-709.
    pubmed
  • 35) Young JE et al. Stem Cell Reports 2018 ; 10 (3) : 1046-58.
    pubmed
  • 36) Wang C et al. Nat Med 2018 ; 24 (5) : 647-57.
    pubmed
  • 37) Kimura J et al. Biol Pharm Bull 2018 ; 41 (4) : 451-7.
    pubmed
  • 38) Chang KH et al. Mol Neurobiol 2019 ; 56 (6) : 3972-83.
    pubmed
  • 39) Kiskinis E et al. Cell Stem Cell 2014 ; 14 (6) : 781-95.
    pubmed
  • 40) Naujock M et al. Stem Cells 2016 ; 34 (6) : 1563-75.
    pubmed
  • 41) Lopez-Gonzalez R et al. Neuron 2016 ; 92 (2) : 383-91.
    pubmed
  • 42) Guo W et al. Nat Commun 2017 ; 8 (1) : 861.
    pubmed
  • 43) Naumann M et al. Nat Commun 2018 ; 9 (1) : 335.
    pubmed
  • 44) Osaki T et al. Sci Adv 2018 ; 4 (10) : eaat5847.
    pubmed
  • 45) Chung CY et al. Science 2013 ; 342 (6161) : 983-7.
    pubmed
  • 46) Ryan SD et al. Cell 2013 ; 155 (6) : 1351-64.
    pubmed
  • 47) Ebert AD et al. Nature 2009 ; 457 (7227) : 277-80.
    pubmed
  • 48) Yoshida M et al. Stem Cell Reports 2015 ; 4 (4) : 561-8.
    pubmed
  • 49) Nihei Y et al. J Biol Chem 2013 ; 288 (12) : 8043-52.
    pubmed
  • 50) Onodera K et al. Mol Brain 2020 ; 13 (1) : 18.
    pubmed
  • 51) Nekrasov ED et al. Mol Neurodegener 2016 ; 11 : 27.
    pubmed

今後の応用が期待される技術開発

P.115 掲載の参考文献

  • 1) Mandai M et al. N Engl J Med 2017 ; 376 : 1038-46.
    pubmed
  • 2) Sherston SN et al. Transplantation 2014 ; 97 : 605-11.
    pubmed
  • 4) Ichise H et al. Stem Cell Reports 2017 ; 9 : 853-67.
    pubmed
  • 5) Riolobos L et al. Mol Ther 2013 ; 21 : 1232-41.
    pubmed
  • 6) Mattapally S et al. J Am Heart Assoc 2018 ; 7 : e010239.
    pubmed
  • 7) Rong Z et al. Cell Stem Cell 2014 ; 14 : 121-30.
    pubmed
  • 8) Gornalusse GG et al. Nat Biotechnol 2017 ; 35 : 765-72.
    pubmed
  • 9) Deuse T et al. Nat Biotechnol 2019 ; 37 : 252-8.
    pubmed
  • 10) Han X et al. Proc Natl Acad Sci USA 2019 ; 116 : 10441-6.
    pubmed
  • 11) Lanza R et al. Nat Rev Immunol 2019 ; 19 : 723-33.
  • 12) Xu H et al. Cell Stem Cell 2019 ; 24 : 566-78.e7.
  • 13) Torikai H et al. Blood 2013 ; 122 : 1341-9.
    pubmed
  • 14) McGranahan N et al. Cell 2017 ; 171 : 1259-71.e11.

P.123 掲載の参考文献

  • 1) Takebe T, Wells JM. Science 2019 ; 364 (6444) : 956-9.
    pubmed
  • 2) Rossi G et al. Nat Rev Genet 2018 ; 19 (11) : 671-87.
  • 3) Clevers H. Cell 2016 ; 16 ; 165 (7) : 1586-97.
  • 4) Jie Zhou et al. PNAS 2018 ; 115 (26) : 6822-7.
    pubmed
  • 5) Bartfeld S et al. Gastroenterology 2015 ; 148 (1) : 126-36.e6.
  • 6) McCracken KW et al. Nature 2014 ; 516 (7531) : 400-4.
    pubmed
  • 7) Ettayebi K et al. Science 2016 ; 353 (6306) : 1387-93.
    pubmed
  • 8) Jie Zhou et al. Science Advances 2017 ; 3 (11) : eaao4966.
    pubmed
  • 9) Nie YZ et al. EBioMedicine 2018 ; 35 : 114-23.
    pubmed
  • 10) Wong AP et al. Nat Biotechnol 2012 ; 30 (9) : 876-82.
    pubmed
  • 11) Schwank G et al. Cell Stem Cell 2013 ; 13 (6) : 653-8.
    pubmed
  • 12) Huch M et al. Cell 2015 ; 160 (1-2) : 299-312.
  • 13) Workman MJ et al. Nat Med 2017 ; 23 (1) : 49-59.
    pubmed
  • 14) van de Wetering M et al. Cell 2015 ; 161 (4) : 933-45.
    pubmed
  • 15) Nanki K et al. Cell 2018 ; 174 (4) : 856-69.e17.
  • 16) Gao D et al. Cell 2014 ; 159 (1) : 176-87.
    pubmed
  • 17) Boj SF et al. 2015 Cell 2015 ; 160 (1-2) : 324-38.
  • 18) Broutier L et al. Nat Med 2017 ; 23 (12) : 1424-35.
    pubmed
  • 19) Sachs N et al. Cell 2018 ; 172 (1-2) : 373-86.e10.
  • 20) Lee SH et al. Cell 2018 ; 173 (2) : 515-28.e17.
  • 21) Dulai PS et al. Hepatology 2017 ; 65 (5) : 1557-65.
    pubmed
  • 22) Chalasani N et al. Hepatology 2018 ; 67 (1) : 328-57.
    pubmed
  • 23) The Lancet Gastroenterol Hepatol 2020 ; 5 (2) : 93.
  • 24) Ouchi R et al. Cell Metab 2019 ; 30 (2) : 374-84.e6.
  • 25) Saito Y et al. Cell Rep 2019 ; 27 (4) : 1265-76.e4.
  • 26) Seino T et al. Cell Stem Cell 2018 ; 22 (3) : 454-67.e6.
  • 27) Fujii M et al. Cell Stem Cell 2016 ; 18 (6) : 827-38.
    pubmed

P.131 掲載の参考文献

  • 1) Huh D et al. Science 2010 ; 328 : 1662-8.
    pubmed
  • 2) Kopec A K et al. J Toxicol Sci 2011 ; 46 (3) : 99-114.
  • 3) 鍵山直子. 動物愛護管理法における3R原則の明文化と実験動物の適正な飼養保管. 日本獣医師会雑誌 2010 ; 63 (6) : 395-8.
  • 4) Huh D et al. Sci Transl Med 2012 ; 4 (159) : 159ra147.
    pubmed
  • 5) Stucki AO et al. Lab Chip 2015 ; 15 (5) : 1302-10.
    pubmed
  • 6) Benam KH et al. Nat Methods 2016 ; 13 (2) : 151-7.
    pubmed
  • 7) Benam KH et al. Cell Syst 2016 ; 3 (5) : 456-66.e4.
  • 8) Kim HJ et al. Lab Chip 2012 ; 12 (12) : 2165-74.
    pubmed
  • 9) Kim HJ et al. Proc Natl Acad Sci U S A 2016 ; 113 (1) : E7-15.
    pubmed
  • 10) Villenave R et al. PLoS One 2017 ; 12 (2) : e0169412.
    pubmed
  • 11) Wilmer MJ et al. Trends Biotechnol 2016 ; 34 (2) : 156-70.
    pubmed
  • 12) Jang KJ et al. Integr Biol (Camb) 2013 ; 5 (9) : 1119-29.
    pubmed
  • 13) Weber EJ et al. Kidney Int 2016 ; 90 (3) : 627-37.
    pubmed
  • 14) Vedula EM et al. PLoS One 2017 ; 12 (10) : e0184330.
    pubmed
  • 15) Lin NYC et al. Proc Natl Acad Sci U S A 2019 ; 116 (12) : 5399-404.
    pubmed
  • 16) Musah S et al. Nat Biomed Eng 2017 ; 1. pii : 0069. doi : 10.1038/s41551-017-0069.
  • 17) Petrosyan A et al. Nat Commun 2019 ; 10 (1) : 3656.
    pubmed
  • 18) Park SE et al. Science 2019 ; 364 (6444) : 960-5.
    pubmed
  • 19) Wang Y et al. Lab Chip 2018 ; 18 (23) : 3606-16.
    pubmed
  • 20) Wang Y et al. Lab Chip 2018 ; 18 (6) : 851-60.
    pubmed
  • 21) Homan KA et al. Nat Methods 2019 ; 16 (3) : 255-62.
    pubmed
  • 22) Campisi M et al. Biomaterials 2018 ; 180 : 117-29.
    pubmed
  • 23) Nashimoto Y et al. Integr Biol (Camb) 2017 ; 9 (6) : 506-18.
    pubmed
  • 24) Nashimoto Y et al. Biomaterials 2020 ; 229 : 119547.
    pubmed
  • 25) Bhatia SN, Ingber DE. Nat Biotechnol 2014 ; 32 (8) : 760-72.
    pubmed
  • 26) Schutgens F et al. Nat Biotechnol 2019 ; 37 (3) : 303-13.
    pubmed
  • 27) Ronaldson-Bouchard K, Vunjak-Novakovic G. Cell Stem Cell 2018 ; 22 (3) : 310-24.
    pubmed

P.137 掲載の参考文献

  • 1) Chen J et al. RAG-2-deficient blastocyst complementation : an assay of gene function in lymphocyte development. Proc Natl Acad Sci U S A 1993 ; 90 : 4528-32.
    pubmed
  • 2) Kobayashi T et al. Generation of Rat Pancreas in Mouse by Interspecific Blastocyst Injection of Pluripotent Stem Cells. Cell 2010 ; 142 : 787-99.
    pubmed
  • 3) Usui J et al. Generation of Kidney from Pluripotent Stem Cells via Blastocyst Complementation. Am J Pathol 2012 ; 180 : 2417-26.
    pubmed
  • 4) Hamanaka S et al. Generation of Vascular Endothelial Cells and Hematopoietic Cells by Blastocyst Complementation. Stem Cell Reports 2018 ; 11 : 988-97.
    pubmed
  • 5) Mori M et al. Generation of functional lungs via conditional blastocyst complementation using pluripotent stem cells. Nat Med 2019 ; 25 : 1691-8.
    pubmed
  • 6) Chang AN et al. Neural blastocyst complementation enables mouse forebrain organogenesis. Nature 2018 ; 563 : 126-30.
    pubmed
  • 7) Matsunari H et al. Blastocyst complementation generates exogenic pancreas in vivo in apancreatic cloned pigs. Proc Natl Acad Sci U S A 2013 ; 110 : 4554-62.
  • 12) Isotani A et al. Formation of a thymus from rat ES cells in xenogeneic nude mouse←→rat ES chimeras. Genes Cells 2011 ; 16 : 397-405.
はじめての方へ
個人／法人会員登録のご案内